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核酸純化的方法及原理

更新時間:2022-08-19      點擊次數(shù):1650
  核酸抽提與純化是分子生物學(xué)試驗的基礎(chǔ),核酸純化方法是影響提取核酸質(zhì)量高低的最重要因素,也是下游分子生物學(xué)試驗成敗的關(guān)鍵。
 
  核酸純化的方法及原理如下:
 
  一、PC抽提法
 
  PC 抽提是去除蛋白質(zhì)有效的手段,但超過了該飽和度,裂解體系中的蛋白質(zhì)不會被一次去除,必須靠多次抽提,方可*去除。且每次抽提都會損失部分核酸。另外,體系太粘稠的壞處是,蛋白質(zhì)難以*去除,以及基因組 DNA 會斷裂得更厲害,所以要注意裂解液與樣品的比例。PC 抽提的另外一個用途是,利用酸性酚可以部分去除 DNA 的特點,在 RNA 抽提時獲得 DNA 殘留極少的 RNA。不過有一點要提醒的是,某些植物樣品,在去除某些雜質(zhì)之前,是不能使用 PC 抽提的,否則核酸必定降解。PC抽提最大的優(yōu)勢是成本低廉,對實驗條件要求較低,對于經(jīng)費緊張的實驗室較為實用。
 
  二、高鹽沉淀法
 
  高鹽沉淀蛋白質(zhì)/醇沉淀方法,同樣也是一個非常不錯的方法。與 PC 抽提方法相比,除了純度的穩(wěn)定性可能要低一點外,該方法幾乎克服了 PC 抽提的所有缺點。更快、更輕松的去除蛋白質(zhì)所可以用于大規(guī)模抽提,但其不足之處是純度 (蛋白質(zhì)殘留) 不夠穩(wěn)定,蛋白質(zhì)的沉淀效率在4℃會更好一些。
 
  三、離心柱法
 
  離心柱純化法,是目前試劑盒提取廣泛應(yīng)用的方法。其最大特點是受人為操作因素影響小,純度的穩(wěn)定性很高 (雖然純度不一定比PC 純化方法更高)。加入的液體通過離心后會進(jìn)入另外一個離心管中,與含有核酸的柱子*是分開的,所以洗滌更*。其致命弱點是樣品過量,提取效率較低,且需要反復(fù)離心,操作復(fù)雜,成本也較高。
 
  四、生物磁珠法
 
  生物磁珠法是將純化介質(zhì)包被在納米級生物磁珠表面,通過介質(zhì)對核酸的吸附,在外加磁場下使核酸附著于磁珠定向移動,從而達(dá)到固液分離純化的作用。與其他幾種方法相比,生物磁珠法具有很多的優(yōu)勢,如:
 
 ?、偬崛§`敏度高(微量材料即可提取)
 
 ?、诩兓兌雀?*與蛋白鹽等雜質(zhì)分離)
 
  ③提取產(chǎn)量高(每mg磁珠能吸附500ug DNA)
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